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一、TUNEL檢測(cè):
TUNEL染色是檢測(cè)細(xì)胞凋亡染色的常見(jiàn)方法,其原理是細(xì)胞在發(fā)生凋亡時(shí),會(huì)激活一些DNA內(nèi)切酶,這些內(nèi)切酶會(huì)切斷核小體間的基因組DNA。基因組DNA斷裂時(shí),暴露的3'-OH可以在末端脫氧核苷酸轉(zhuǎn)移酶(Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT) 的催化下加上熒光素、生物素標(biāo)記的dUTP,從而可以通過(guò)熒光顯微鏡或化學(xué)顯色方法檢測(cè)細(xì)胞凋亡的情況。
根據(jù)樣本選擇相應(yīng)樣本處理,動(dòng)物組織需包埋選擇1,動(dòng)物組織需冰凍選擇2,細(xì)胞爬片樣本選擇3,細(xì)胞涂片樣本選擇4。
1、 石蠟包埋組織切片
① 將組織切片放入二甲苯中浸泡5min,重復(fù)1次,以徹底脫掉石蠟。
② 100%乙醇浸泡5min,重復(fù)1次。
③ 梯度乙醇(90、80、70%)各浸洗1次,每次3min。
④ PBS輕輕潤(rùn)洗,濾紙小心吸干多余液體。用石蠟筆或疏水筆在周圍描繪樣品分布輪廓,便于下游透性處理和平衡標(biāo)記操作。
⑤ 配制Proteinase K工作液:PBS稀釋2mg/mL的Proteinase K溶液(1:100),終濃度為20μg/mL。
⑥ 滴100μL上述Proteinase K工作液,使其全部覆蓋,孵育20min。
⑦ PBS潤(rùn)洗樣本,并用濾紙小心吸樣本周圍液體。處理后放于濕盒保存。
2、組織冰凍切片
① 玻片浸沒(méi)于4%多聚甲醛溶液(溶于PBS)中固定,孵育15min。
② 用濾紙小心吸干周圍多余液體。
③ 將玻片浸沒(méi)于PBS溶液,孵育15min。
④ 用濾紙小心吸干周圍多余液體。用石蠟筆或疏水筆在周圍描繪樣品分布輪廓,便于下游透性處理和平衡標(biāo)記操作。
⑤ 配制Proteinase K工作液:PBS稀釋2mg/mL的Proteinase K溶液(1:100),終濃度為20μg/mL。
⑥ 滴加100μL上述Proteinase K工作液,使其被全部覆蓋,室溫孵育10min。
⑦ 用PBS溶液潤(rùn)洗樣本3次。
⑧ PBS潤(rùn)洗樣本,并用濾紙小心吸樣本周圍液體。處理后放于濕盒保存。
3、細(xì)胞爬片的準(zhǔn)備
在Lab-Tek載玻片小室(Chamber Slides)上培養(yǎng)貼壁細(xì)胞。在凋亡誘導(dǎo)處理之后,用PBS洗2遍載玻片。
4、 細(xì)胞涂片的制備
① 準(zhǔn)備多聚賴氨酸包被的載玻片:100 μL 0.01% (w/v)多聚賴氨酸水溶液滴至載玻片表面,涂散為一薄層,晾干。去離子水漂洗,晾干30-60 min。
② 以約2×107個(gè)細(xì)胞/mL的濃度將細(xì)胞重懸于PBS中,吸取100μL細(xì)胞懸液滴于多聚賴氨酸包被的載玻片上,用一片干凈載玻片輕柔涂開細(xì)胞懸液。
③ 固定細(xì)胞,將載玻片浸入含4%新鮮配制于PBS中的多聚甲醛染色缸中,4℃放置25min。
④ 洗滌載玻片,將其浸入PBS中,室溫放置5min。重復(fù)用PBS洗1次。
⑤ 用濾紙小心吸干玻片上樣本周圍多余液體。
⑥ 配制Proteinase K工作液:PBS稀釋2mg/mLProteinase K溶液(1:100),終濃度為20μg/mL。
⑦ 滴加100μL上述Proteinase K溶液,使其被全部覆蓋,室溫孵育5min(或浸于0.2%配制于PBS中的Triton X-100溶液,孵育5min進(jìn)行通透處理)。
⑧ 在盛有PBS溶液敞口燒杯中浸沒(méi)清洗樣本2次。
⑨ 用濾紙小心吸樣本周圍液體。處理后放于濕盒保存。
三、實(shí)驗(yàn)流程
① 按1:5的比例用去離子水稀釋5×Equilibration Buffer。
② 樣本滴加100μL 1×Equilibration Buffer,使其全部覆蓋待檢樣本區(qū)域,室溫孵育10-30min。或?qū)⑤d玻片放入1個(gè)含1×Equilibration Buffer的缸中,保證緩沖液沒(méi)過(guò)樣本。平衡細(xì)胞的同時(shí)在冰上解凍FITC-12-dUTP Labling Mix,并依下表,準(zhǔn)備足夠量的用于所有實(shí)驗(yàn)和可選陽(yáng)性對(duì)照反應(yīng)的TdT孵育緩沖液。
表 準(zhǔn)備用于實(shí)驗(yàn)的和可選陽(yáng)性對(duì)照反應(yīng)的TdT孵育緩沖液
組分 | 體積(μL/50μL體系) |
ddH2O | 34 |
5×Equilibration Buffer | 10 |
FITC-12-dUTP Labling Mix | 5 |
Recombinant TdT Enzyme | 1 |
陰性對(duì)照體系:準(zhǔn)備1份不含TdT酶的對(duì)照孵育緩沖液,用ddH2O替代TdT酶。
③ 平衡后的區(qū)域周圍用吸水紙洗掉100μL 1×Equilibration Buffer中的大部分,在5cm2面積細(xì)胞上加入50μLTdT孵育緩沖液。之后操作用鋁箔紙包裹避光處理。
④ 塑料蓋玻片蓋在細(xì)胞上以保證試劑的平均分布。濕盒底部放上用水浸濕的紙巾,將載玻片置于濕盒內(nèi),37℃孵育60min。
⑤ 移除塑料蓋玻片,將切片置于PBS溶液孵育5min。
⑥ 輕輕去掉多余液體,換用新鮮PBS溶液孵育5 min,重復(fù)1次。
⑦ 用濾紙輕輕擦掉樣本周圍及背面的PBS溶液。
⑧ 樣本在染色缸染色,在黑暗中將載玻片浸入裝有PI溶液(1μg/mL,用PBS新鮮配制并稀釋)的染色缸,放置5min。
⑨ 洗滌樣本,將載玻片浸入去離子水,放置5min,重復(fù)2次,總共洗3次。
⑩ 叩干載玻片上多余水且用吸水紙擦拭細(xì)胞周邊區(qū)域。
? 立即在熒光顯微鏡下分析樣本,用標(biāo)準(zhǔn)的熒光過(guò)濾裝置在520±20nm的熒光下觀察綠色熒光;在>620nm下觀察PI的紅色熒光,或在460nm觀察藍(lán)色的DAPI。如有必要,載玻片能在4℃黑暗條件下存放過(guò)夜。PI/DAPI能將凋亡和未凋亡的細(xì)胞都染成紅色/藍(lán)色,只在凋亡的細(xì)胞核中才有FITC-12-dUTP摻入而定位的綠色熒光。
1、提供固定完全的組織樣本。組織離體后,選擇合適的固定液和容器立即固定,固定液的量建議大于組織體積的10-15倍,固定時(shí)間建議24-48h,大標(biāo)本固定12h,再切開固定。固定完全后盡快送檢。標(biāo)本常溫(24℃左右)或冷藏(4℃)固定,切勿冷凍結(jié)冰,固定樣本常溫運(yùn)輸送樣。
2、提供編號(hào)清晰的蠟塊或蠟頭。
3、石蠟切片常溫運(yùn)輸,冰凍切片-80℃保存干冰運(yùn)輸。
4、爬片必須充分固定,常溫運(yùn)輸。
1、任何實(shí)驗(yàn)方法都存在局限性,根據(jù)TUNEL實(shí)驗(yàn)的本質(zhì)問(wèn)題,公司不能保證結(jié)果中凋亡細(xì)胞的多少(即假陽(yáng)性、或偏陰性結(jié)果)。
2、TUNEL染色建議先做預(yù)實(shí)驗(yàn)(預(yù)實(shí)驗(yàn)由客戶提供預(yù)期高表達(dá)的樣本,蠟塊或切片皆可),確認(rèn)效果后,再做正式實(shí)驗(yàn)。預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果優(yōu)先由客戶自行確認(rèn),預(yù)實(shí)驗(yàn)和正式實(shí)驗(yàn)間隔周期不要太久,建議連續(xù)三周內(nèi)完成。
3、正式實(shí)驗(yàn)的趨勢(shì)我司不做保證。
六、實(shí)驗(yàn)圖:
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