實驗技巧
免疫組化(IHC)實驗小技巧
1、組織固定越新鮮越好,盡快固定,多選用4%多聚甲醛固定液。但對于不同的組織和抗原,可選用不同的固定液;
2、組織脫水和透明時間不能太長,否則在切片時容易碎片,切不完整;
3、切片展片時有些組織在切片后難以在水中展開,這時可適當(dāng)?shù)卦谒屑尤霂椎我掖迹?/span>
4、烤片:要控制烤片的溫度和時間,溫度太高或時間太長,抗原容易丟失??酒臅r候
5、切片呈60°角斜立,切片和載玻片之間的水滴或氣泡會從邊緣滑出,減少對切片的損壞;
蠟塊及切片的保存:最好在4℃保存;
6、脫片問題:Poly-L-Lysine(多聚賴氨酸)為目前免疫組化染色工作中最常用的一種防脫片劑,6ml的多聚賴氨酸溶液可按1:10稀釋成60ml的工作液,適合于需要酶消化、微波、高溫高壓的防脫片處理。如不行,可用雙重處理(APES和Poly-L-Lysine)的切片。在以上兩種條件都行不通的情況下,可用如下方法:切片在脫蠟前,放在APES 1:50丙酮溶液中浸泡3min,晾干,即可進(jìn)行下一步;
7、滅活內(nèi)源性酶:HRP系統(tǒng):3%雙氧水滅活;AP系統(tǒng):3%HAc滅活;
8、暴露抗原:對于不同的組織,不同的抗原,不同的抗體,所采用的方法應(yīng)不一樣,可進(jìn)行熱修復(fù)、胰酶消化、既不修復(fù)也不消化。膠原還可以用胃蛋白酶消化等;
9、封閉:在山羊血清封閉,非特異性染色仍然較強(qiáng)時,可延長封閉時間或用濃縮血清封閉;
抗體稀釋:應(yīng)遵循“現(xiàn)用現(xiàn)配”的原則,對于PBS稀釋的抗體一定要當(dāng)天使用;
10、背景高:在抗體濃度、反應(yīng)時間、反應(yīng)溫度等合適的條件下,如果背景依舊高,可采用含1‰ Tween20的PBS洗,特別是在顯色之前要多洗;
11、顯色:DAB顯色時間不是固定的,主要由顯微鏡下控制顯色時間,到出現(xiàn)淺棕色本底時即可沖洗;若很短時間就出現(xiàn)背景很深,還有可能你前面的封閉非特異性蛋白不全,需要延長封閉時間;
12、返藍(lán):在蘇木素復(fù)染后,可用堿性緩沖液(如PBS)或Na2HPO4的飽和溶液返藍(lán);
整個操作過程中,切片千萬不能干燥,否則會有非特異性染色。