想驗證miRNA與靶基因的作用? ——雙螢光素酶報告基因檢測

想了解miRNA和lncRNA/circRNA的靶向互作?——雙螢光素酶報告基因檢測

想知道轉(zhuǎn)錄因子對下游基因的作用? ——雙螢光素酶報告基因檢測

沒錯，雙螢光素酶體系就是這么的強大!

雙熒光素酶報告基因通常以螢火蟲熒光素酶為報告基因，以海腎熒光素酶為內(nèi)參基因。所構(gòu)成的報告系統(tǒng)具有靈敏度高、動態(tài)范圍廣、應用靈活等優(yōu)勢，廣泛應用于基因調(diào)控、非編碼RNA靶向互作等研究領域。今天，我們就來重點聊聊這個話題。

雙熒光素酶實驗的原理

將目的基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控原件構(gòu)建入帶有熒光素酶(Firefly luciferase)的表達載體，構(gòu)建成報告基因質(zhì)粒，使這段序列調(diào)控luciferase的轉(zhuǎn)錄表達。然后將報告基因質(zhì)粒轉(zhuǎn)染細胞，給予其不同的處理后裂解細胞，并加入底物熒光素(luciferin)，luciferase可催化luciferin發(fā)出熒光(最強波長在560nm左右)。檢測得到的熒光值高低可以判斷不同處理組對該轉(zhuǎn)錄調(diào)控原件的影響。為避免由于質(zhì)粒轉(zhuǎn)染細胞時效率差異所造成的誤差，通常會轉(zhuǎn)入Renilla luciferase的報告基因質(zhì)粒作為內(nèi)參(最強波長在465nm左右)，即雙熒光報告系統(tǒng)。

螢光素酶實驗具體有哪些應用？

1、驗證microRNA同mRNA靶向互作。將待測基因的3’UTR序列插入報告基因載體，再共轉(zhuǎn)入該microRNA，檢測熒光素酶活性下降，則提示為其靶序列。

2、驗證microRNA同lncRNA靶向互作。將待測lncRNA序列插入報告基因載體的3’UTR區(qū)域，檢測熒光素酶活性。

3、啟動子結(jié)構(gòu)分析。將啟動子區(qū)域(約2k左右)進行分段截短或突變，構(gòu)建入報告基因載體，檢測熒光素酶活性。

4、啟動子SNP分析。一些基因的啟動子區(qū)域存在單核苷酸多態(tài)性，可運用熒光素酶報告系統(tǒng)分析其相對活性。

5、驗證信號通路是否激活。將該信號通路的下游相應原件序列構(gòu)建入報告基因載體，檢測不同上游條件下，其熒光素酶活性，即下游信號通路的響應情況。

雙螢光素酶實驗的具體步驟

1、報告基因質(zhì)粒的構(gòu)建。將目的片段插入到熒光素酶表達的報告基因載體上，如pGL3-basic。

2、轉(zhuǎn)染細胞。將報告基因質(zhì)粒和phRL-TK(內(nèi)參)共轉(zhuǎn)染細胞，根據(jù)需要對細胞進行處理。共轉(zhuǎn)染時，由于內(nèi)參具有很強的啟動子，因此報告基因質(zhì)粒：內(nèi)參轉(zhuǎn)染量一般為10:1~50:1。

Luciferase活性測定：

⑴ 初次使用時，配制LAR II，即Firefly luciferase的底物。將LAR II溶解在LAR II buffer中，并分裝-80℃避光保存。

⑵ 加入1X PLB，室溫裂解細胞15 min。

⑶配制Stop&Glo，即Renilla luciferase的底物，能夠終止LAR II的反應。

⑷ 測定熒光值。向40 ul的LAR II中加入10 ul細胞裂解液，吹打混勻后，檢測讀數(shù)，即為Firefly luciferase的值。加入40 ul Stop&Glo，再次讀數(shù)，即為Renilla luciferase的值。

⑸ 數(shù)據(jù)處理。首先計算出每管的Firefly luciferase/Renillaluciferase的比值，再以control組的比值為單位1，即可得到不同處理組的相對luciferase活性，也就是該處理組基因轉(zhuǎn)錄的調(diào)控活性。

實驗注意事項

1、為保證熒光素酶檢測試劑的穩(wěn)定性可以采取適當分裝后避光保存的方法，以免反復凍融和長時間暴露于室溫。

2、為取得最 佳檢測效果，同一批樣品最好保證相同的測定時間，通常為10s。